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MICROSCOPE FINDER ver 1.0
나에게 가장 적합한 현미경이란?
몇 가지 질문에 답하시면 최적의 현미경을 추천해드립니다
전문 지식이 없어도 괜찮아요 — 차근차근 안내해드릴게요
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질문 1 / 7
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교육용 · 일상 관찰용 현미경을 찾고 있어요
학교 · 교육기관 · 병원 · 산업 현장 등에서 일상적인 관찰과 검사 목적으로 사용할 현미경을 찾고 있어요. 간단한 질문으로 적합한 모델을 추천해드려요. Education / Routine Microscope
🔬
연구용 현미경을 찾고 있어요
대학 · 연구기관 · 기업 R&D에서 형광 이미징 · 세포 관찰 · 조직 분석 등 전문적인 연구 목적으로 사용할 현미경을 찾고 있어요. 관찰 조건과 샘플에 맞게 추천해드려요. Research Microscope
⚙️
고급 모델의 구성을 직접 설계하고 싶어요
DM4B · DM6B · DMi8 · M205 FA 등 고급 모델을 선택하고 Stage · 형광 · 카메라 등 대표 옵션을 직접 구성해요. 상담용 구성표를 만들 수 있어요. Advanced Configuration
💡 현미경이 처음이시군요!
현미경이 처음이시라면 기초 지식을 먼저 읽어보시면 도움이 돼요.
아래 버튼으로 확인하거나, 바로 추천을 받으셔도 괜찮아요 😊
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고급 구성
어떤 현미경이 필요하신가요?
단일 선택
🔬
정립현미경 (Upright)
슬라이드·조직절편·형광 — DM4B / DM6B / DM6B with THUNDER
🧫
도립현미경 (Inverted)
세포·라이브셀·오가노이드 — DMi8 / DMi8 with THUNDER
🔭
실체현미경 (Stereo)
형광 스크리닝·모델생물·정밀해부 — M205 FCA / M205 FA / M205 FA with THUNDER
고급 정립 — 모델 선택
어떤 모델을 구성하시겠어요?
단일 선택
Leica DM4B
Automated 정립현미경 · Motorized 콘덴서/형광필터터렛 · Manual Coded 노즈피스
Leica DM6B
완전 전동화 정립현미경 · Motorized 노즈피스/Z-focus/카메라포트 · Scanning Stage 가능
Leica DM6B with THUNDER
DM6B + THUNDER 3D 실시간 클리어링 · 전용 Workstation 포함
고급 도립 — 모델 선택
어떤 모델을 구성하시겠어요?
단일 선택
Leica DMi8
수동~완전자동 도립현미경 · Motorized 옵션 선택 가능 · Live Cell 인큐베이터 챔버 장착 가능
Leica DMi8 with THUNDER
DMi8 + THUNDER 3D 실시간 클리어링 · 전용 Workstation 포함
DM4B — 관찰법 선택
관찰법을 선택해주세요
복수 선택 가능
명시야 (Brightfield)
기본 포함
위상차 (Phase Contrast)
살아있는 세포·무염색 샘플
편광 (Polarization)
결정·콜라겐·이방성 구조
DIC (미분간섭)
Glass Bottom 샘플
형광 (Fluorescence)
면역형광염색·GFP 발현
DM4B — 대물렌즈 선택
대물렌즈를 선택해주세요
복수 선택 가능
5×
10×
20×
40×
63×
100× (Oil)
DM4B — Stage 선택
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Manual Stage
기본 수동 재물대
Motorized Stage
전동 재물대
Scanning Stage
자동 슬라이드 스캐닝 — LAS X Navigator 자동포함
DM4B — 형광체 선택
형광체를 선택해주세요
형광 미사용 시 선택 없이 계속하기
DAPI / Hoechst
핵 염색 (UV)
GFP / FITC / Alexa 488
녹색 (488nm)
Cy3 / TRITC / Alexa 555
주황 (550nm)
mCherry / Texas Red
적색 (560-600nm)
Cy5 / Alexa 647
진적색 (647nm)
YFP / Venus
황색 형광 (514-528nm)
Cy7 / Alexa 750 (근적외선)
근적외선 (743nm+)
DM4B — 형광 조명 선택
형광 조명을 선택해주세요
단일 선택
pE-300white
DAPI·GFP·Cy3 3채널 범용
pE-400max
4채널 독립 제어 — DM4B 권장
pE-800
8채널 고급 형광 조명
DM4B — 카메라 선택
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C
컬러 2.3MP — 명시야·루틴 형광
K7
컬러 7.1MP — 고해상도
K8
흑백 sCMOS 95% QE — 고감도 형광
Flexacam C5
컬러 5MP — 명시야 문서화·교육용
DM4B — LAS X 모듈 선택
LAS X 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능
Multichannel Acquisition
기본 포함
Time-lapse
LAS X Navigator
Scanning Stage 시 자동포함
Colocalization
2D Analysis
DM4B — 구성 요약
DM6B — 관찰법 선택
관찰법을 선택해주세요
복수 선택 가능
명시야 (Brightfield)
기본 포함
위상차 (Phase Contrast)
편광 (Polarization)
DIC (미분간섭)
형광 (Fluorescence)
DM6B — 대물렌즈 선택
대물렌즈를 선택해주세요
복수 선택 가능
5×
10×
20×
40×
63×
100× (Oil)
DM6B — Motorized 옵션
Motorized 옵션을 선택해주세요
복수 선택 가능
Motorized Z-focus
Z-stack·타임랩스 포커스
Motorized Z-focus + Autofocus
장시간 타임랩스 포커스 유지
Motorized Nosepiece
소프트웨어로 대물렌즈 전환
DM6B — Stage 선택
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Manual Stage
Motorized Stage
Scanning Stage
LAS X Navigator 자동포함
8-Slide Scanning Stage
슬라이드 8개 자동 스캐닝
DM6B — 형광체 선택
형광체를 선택해주세요
형광 미사용 시 선택 없이 계속하기
DAPI / Hoechst
GFP / FITC / Alexa 488
Cy3 / TRITC / Alexa 555
mCherry / Texas Red
Cy5 / Alexa 647
Calcium Imaging (Fura-2)
YFP / Venus
황색 형광 (514-528nm)
Cy7 / Alexa 750 (근적외선)
근적외선 (743nm+)
DM6B — 형광 조명 선택
형광 조명을 선택해주세요
단일 선택
pE-400max
4채널 독립 제어 — DM6B 권장
pE-800
8채널 고급
pE-800fura
Calcium imaging 전용
DM6B — 카메라 선택
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C
컬러 2.3MP
K7
컬러 7.1MP
K8
흑백 sCMOS 95% QE
K8 + K3C (듀얼)
형광 + 명시야 동시
K8 + K7 (듀얼)
형광 + 고해상도 컬러
DM6B — LAS X 모듈
LAS X 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능
Multichannel Acquisition
기본 포함
Time-lapse
LAS X Navigator
Colocalization
2D Analysis
DM6B — 구성 요약
DM6B with THUNDER — 관찰법
관찰법을 선택해주세요
복수 선택 가능
명시야 (Brightfield)
기본 포함
위상차 (Phase Contrast)
DIC (미분간섭)
형광 (Fluorescence)
THUNDER 사용 시 필수
DM6B with THUNDER — 형광체
형광체를 선택해주세요
복수 선택 가능
DAPI / Hoechst
GFP / FITC / Alexa 488
Cy3 / TRITC / Alexa 555
mCherry / Texas Red
Cy5 / Alexa 647
Calcium Imaging (Fura-2)
DM6B with THUNDER — 형광 조명
형광 조명을 선택해주세요
단일 선택
pE-800
8채널 — DM6B with THUNDER 권장
pE-800fura
Calcium imaging 포함 시
DM6B with THUNDER — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K8
흑백 sCMOS 95% QE — THUNDER 필수 권장
K8 + K3C (듀얼)
K8 + K7 (듀얼)
DM6B with THUNDER — LAS X 모듈
LAS X 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능
Multichannel Acquisition
Time-lapse
LAS X Navigator
Colocalization
DM6B with THUNDER — 구성 요약
DMi8 — 관찰법 선택
관찰법을 선택해주세요
복수 선택 가능
명시야 (Brightfield)
기본 포함
위상차 (Phase Contrast)
살아있는 세포 — 기본 포함
DIC (미분간섭)
Glass Bottom Dish 필요
형광 (Fluorescence)
DMi8 — Motorized 옵션
Motorized 옵션을 선택해주세요
복수 선택 가능
Motorized Z-focus
Z-stack·타임랩스
Motorized Z-focus + Autofocus
장시간 라이브셀 타임랩스
Motorized Camera Port
아이피스/카메라 전환 자동화
Live Cell 인큐베이터 챔버
CO₂·온도·습도 제어
DMi8 — Stage 선택
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Manual Stage
Motorized Stage
Scanning Stage
멀티포지션·타임랩스 자동화
DMi8 — 형광체
형광체를 선택해주세요
형광 미사용 시 선택 없이 계속하기
DAPI / Hoechst
GFP / FITC / Alexa 488
Cy3 / TRITC / Alexa 555
mCherry / Texas Red
Cy5 / Alexa 647
Calcium Imaging (Fura-2)
YFP / Venus
황색 형광 (514-528nm)
Cy7 / Alexa 750 (근적외선)
근적외선 (743nm+)
DMi8 — 형광 조명
형광 조명을 선택해주세요
단일 선택
pE-300white
DAPI·GFP·Cy3 3채널 범용
pE-400max
4채널 독립 제어
pE-800
8채널 고급
pE-800fura
Calcium imaging 전용
DMi8 — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C
컬러 2.3MP
K7
컬러 7.1MP
K8
흑백 sCMOS 95% QE
K8 + K3C (듀얼)
형광 + 명시야 동시
K8 + K7 (듀얼)
형광 + 고해상도 컬러
DMi8 — LAS X 모듈
LAS X 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능
Multichannel Acquisition
기본 포함
Time-lapse
LAS X Navigator
Colocalization
2D Analysis
DMi8 — 구성 요약
DMi8 with THUNDER — 관찰법
관찰법을 선택해주세요
명시야·형광은 기본 포함 / 위상차 또는 DIC 중 택일
명시야 (Brightfield)
기본 포함
형광 (Fluorescence)
THUNDER 사용 시 필수 — 기본 포함
위상차 (Phase Contrast)
플라스틱 Dish·무염색 세포
DIC (미분간섭)
Glass Bottom Dish — 더 높은 해상도
DMi8 with THUNDER — Motorized 옵션
Motorized 옵션을 선택해주세요
복수 선택 가능
Motorized Z-focus
Motorized Z-focus + Autofocus
Live Cell 인큐베이터 챔버
CO₂·온도·습도 제어
DMi8 with THUNDER — Stage 선택
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Manual Stage
Motorized Stage
Scanning Stage
멀티포지션·타임랩스 자동화
DMi8 with THUNDER — 형광체
형광체를 선택해주세요
복수 선택 가능
DAPI / Hoechst
GFP / FITC / Alexa 488
Cy3 / TRITC / Alexa 555
mCherry / Texas Red
Cy5 / Alexa 647
Calcium Imaging (Fura-2)
YFP / Venus
황색 형광 (514-528nm)
Cy7 / Alexa 750 (근적외선)
근적외선 (743nm+)
DMi8 with THUNDER — 형광 조명
형광 조명을 선택해주세요
단일 선택
pE-800
8채널 — DMi8 THUNDER 권장
pE-800fura
Calcium imaging 포함 시
DMi8 with THUNDER — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K8
흑백 sCMOS 95% QE — THUNDER 필수 권장
K8 + K3C (듀얼)
K8 + K7 (듀얼)
DMi8 with THUNDER — LAS X 모듈
LAS X 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능
Multichannel Acquisition
Time-lapse
LAS X Navigator
Colocalization
DMi8 with THUNDER — 구성 요약
고급 실체 — 모델 선택
어떤 모델을 구성하시겠어요?
단일 선택
Leica M205C
형광 없는 최고급 실체현미경 · FusionOptics™ · 명시야·해부·정밀관찰
Leica M205 FCA
고속 형광 스크리닝 · Motorized 형광필터터렛 · FluoCombi III 가능
Leica M205 FA
완전 자동화 형광 실체현미경 · Motorized 형광터렛 · LAS X Navigator 가능
Leica M205 FA with THUNDER
M205 FA + THUNDER 3D 클리어링 · 전용 Workstation 포함
M205C — 명시야 조명
명시야 조명 방식을 선택해주세요
단일 선택
반사식 조명 (LED5000 시리즈)
불투명 샘플·해부·정밀 검사 → LED5000 세부 선택 후 반사식 Base 선택
투과식 조명 (TL Ergo Base)
투명 샘플·슬라이드 → TL3000 또는 TL5000 Ergo 선택
반사식 + 투과식 병용
LED5000 반사식 조명 + TL Ergo Base 조합
M205C — 반사식 조명 선택
LED5000 조명 모델을 선택해주세요
단일 선택
LED5000 RL — 범용 링조명
균일 조명 · 40 LED · 일반 관찰·문서화
LED5000 SLI — 구즈넥 스팟
방향 자유 설정 · 2암 독립 제어
LED5000 NVI — 수직근접 조명
구멍·홈 내부 검사 특화
LED5000 MCI — 멀티콘트라스트
표면 긁힘·요철 고대비
LED5000 CXI — 동축 조명
반도체 웨이퍼·광택 평탄 샘플
LED5000 HDI — 고확산 FlexiDome
고반사 샘플 무그림자
M205C — 투과식 Base
투과식 Base를 선택해주세요
단일 선택
TL3000 Ergo
기본형 투과식 베이스 · 투명 샘플·슬라이드·수생생물
TL5000 Ergo
고급형 투과식 베이스 · 더 높은 광량 · 고해상도
M205C — 반사식 Base
반사식 Base 크기를 선택해주세요
단일 선택
반사식 Base — Medium Size
표준 사이즈 · 일반 실험대 사용
반사식 Base — Large Size
대형 샘플·넓은 작업 공간 필요 시
M205C — Objective Revolver
Objective Revolver를 선택해주세요
단일 선택
불필요
단일 대물렌즈
2-Objective Revolver
대물렌즈 2개 장착
FluoCombi III
스테레오 + 5× HR 렌즈
M205C — 대물렌즈
대물렌즈를 선택해주세요
단일 선택
FluoCombi III 선택 시 — 5× HR 렌즈가 기본 포함됩니다. 아래에서 조합할 일반 대물렌즈 1개를 선택해주세요.
0.5× planachromatic
WD 135mm · 배율 범위 3.9×~80×
✓
0.63× planapochromatic
WD 97mm · 배율 범위 4.9×~102×
✓
0.8× planachromatic
WD 67mm · 배율 범위 6.2×~128×
✓
1× planachromatic
WD 59mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1× planapochromatic
WD 61.5mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1.6× planapochromatic
WD 30.5mm · 배율 범위 12.5×~256×
✓
2× planapochromatic
WD 20.1mm · 배율 범위 15.6×~320×
✓
M205C — Stage
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Stage 없음 (Base만 사용)
Base 위에 별도 Stage 없이 사용
Manual XY Stage
수동 Stage · Base 위에 장착
LMT260 Scanning Stage
Base 위에 장착 · LAS X Navigator 자동포함
M205C — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C 컬러 · 2.3MP
보급형 컬러
K7 컬러 · 7.1MP
고급 올라운더 — 형광 시 우선 추천
K8 흑백 sCMOS · 고감도
고급 형광 전용
M205C 구성 결과
선택하신 구성에 맞는 현미경입니다
M205 FCA — 명시야 조명
명시야 조명 방식을 선택해주세요
단일 선택
반사식 조명 (LED5000 시리즈)
불투명 샘플·해부·정밀 검사 → LED5000 세부 선택 후 반사식 Base 선택
투과식 조명 (TL Ergo Base)
투명 샘플·슬라이드 → TL3000 또는 TL5000 Ergo 선택
반사식 + 투과식 병용
LED5000 반사식 조명 + TL Ergo Base 조합
M205 FCA — 반사식 조명 선택
LED5000 조명 모델을 선택해주세요
단일 선택
LED5000 RL — 범용 링조명
균일 조명 · 40 LED · 일반 관찰·문서화
LED5000 SLI — 구즈넥 스팟
방향 자유 설정 · 2암 독립 제어
LED5000 NVI — 수직근접 조명
구멍·홈 내부 검사 특화
LED5000 MCI — 멀티콘트라스트
표면 긁힘·요철 고대비
LED5000 CXI — 동축 조명
반도체 웨이퍼·광택 평탄 샘플
LED5000 HDI — 고확산 FlexiDome
고반사 샘플 무그림자
M205 FCA — 투과식 Base
투과식 Base를 선택해주세요
단일 선택
TL3000 Ergo
기본형 투과식 베이스 · 투명 샘플·슬라이드·수생생물
TL5000 Ergo
고급형 투과식 베이스 · 더 높은 광량 · 고해상도
M205 FCA — 반사식 Base
반사식 Base 크기를 선택해주세요
단일 선택
반사식 Base — Medium Size
표준 사이즈 · 일반 실험대 사용
반사식 Base — Large Size
대형 샘플·넓은 작업 공간 필요 시
M205 FCA — Objective Revolver
Objective Revolver를 선택해주세요
단일 선택
불필요
단일 대물렌즈
2-Objective Revolver
대물렌즈 2개 장착
FluoCombi III
스테레오 + 5× HR 렌즈
M205 FCA — 대물렌즈
대물렌즈를 선택해주세요
단일 선택
FluoCombi III 선택 시 — 5× HR 렌즈가 기본 포함됩니다. 아래에서 조합할 일반 대물렌즈 1개를 선택해주세요.
0.5× planachromatic
WD 135mm · 배율 범위 3.9×~80×
✓
0.63× planapochromatic
WD 97mm · 배율 범위 4.9×~102×
✓
0.8× planachromatic
WD 67mm · 배율 범위 6.2×~128×
✓
1× planachromatic
WD 59mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1× planapochromatic
WD 61.5mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1.6× planapochromatic
WD 30.5mm · 배율 범위 12.5×~256×
✓
2× planapochromatic
WD 20.1mm · 배율 범위 15.6×~320×
✓
M205 FCA — Stage
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Stage 없음 (Base만 사용)
Base 위에 별도 Stage 없이 사용
Manual XY Stage
수동 Stage · Base 위에 장착
LMT260 Scanning Stage
Base 위에 장착 · LAS X Navigator 자동포함
M205 FCA — 형광체
사용할 형광체를 선택해주세요
복수 선택 가능
DAPI
핵 염색 · ~360nm
✓
FITC / GFP
녹색 형광 · ~490nm
✓
TRITC / mCherry
적색 형광 · ~550nm
✓
Cy3
오렌지-적색 · ~550nm
✓
Cy5
근적외 · ~650nm
✓
Cy7
근적외 · ~750nm+ → pE-800 필수
✓
기타
위에 없는 형광체
✓
M205 FCA — 형광조명
형광조명 장치를 선택해주세요
단일 선택 — 형광체 기반 권장 자동표시
pE-300white
DAPI · FITC · TRITC — 일반 멀티채널
pE-400max
DAPI ~ Cy5 — 고출력 멀티채널
pE-800
DAPI ~ Cy7 — 근적외 형광 필수
M205 FCA — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C 컬러 · 2.3MP
보급형 컬러
K7 컬러 · 7.1MP
고급 올라운더 — 형광 시 우선 추천
K8 흑백 sCMOS · 고감도
고급 형광 전용
M205 FCA — LAS X 모듈
필요한 소프트웨어 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능 — Multichannel은 기본 포함
Time-lapse
시간별 연속 이미징
✓
Multichannel Acquisition — 기본 포함
다채널 형광 동시 획득
✓
LAS X Navigator (LMT260 선택 시 자동포함)
Mark & Find · Stitching
✓
2D Analysis
세포 계수·면적·강도 측정
✓
M205 FCA 구성 결과
선택하신 구성에 맞는 현미경입니다
M205 FA — 명시야 조명
명시야 조명 방식을 선택해주세요
단일 선택
반사식 조명 (LED5000 시리즈)
불투명 샘플·해부·정밀 검사 → LED5000 세부 선택 후 반사식 Base 선택
투과식 조명 (TL Ergo Base)
투명 샘플·슬라이드 → TL3000 또는 TL5000 Ergo 선택
반사식 + 투과식 병용
LED5000 반사식 조명 + TL Ergo Base 조합
M205 FA — 반사식 조명 선택
LED5000 조명 모델을 선택해주세요
단일 선택
LED5000 RL — 범용 링조명
균일 조명 · 40 LED · 일반 관찰·문서화
LED5000 SLI — 구즈넥 스팟
방향 자유 설정 · 2암 독립 제어
LED5000 NVI — 수직근접 조명
구멍·홈 내부 검사 특화
LED5000 MCI — 멀티콘트라스트
표면 긁힘·요철 고대비
LED5000 CXI — 동축 조명
반도체 웨이퍼·광택 평탄 샘플
LED5000 HDI — 고확산 FlexiDome
고반사 샘플 무그림자
M205 FA — 투과식 Base
투과식 Base를 선택해주세요
단일 선택
TL3000 Ergo
기본형 투과식 베이스 · 투명 샘플·슬라이드·수생생물
TL5000 Ergo
고급형 투과식 베이스 · 더 높은 광량 · 고해상도
M205 FA — 반사식 Base
반사식 Base 크기를 선택해주세요
단일 선택
반사식 Base — Medium Size
표준 사이즈 · 일반 실험대 사용
반사식 Base — Large Size
대형 샘플·넓은 작업 공간 필요 시
M205 FA — Objective Revolver
Objective Revolver를 선택해주세요
단일 선택
불필요
단일 대물렌즈
2-Objective Revolver
대물렌즈 2개 장착
FluoCombi III
스테레오 + 5× HR 렌즈
M205 FA — 대물렌즈
대물렌즈를 선택해주세요
단일 선택
FluoCombi III 선택 시 — 5× HR 렌즈가 기본 포함됩니다. 아래에서 조합할 일반 대물렌즈 1개를 선택해주세요.
0.5× planachromatic
WD 135mm · 배율 범위 3.9×~80×
✓
0.63× planapochromatic
WD 97mm · 배율 범위 4.9×~102×
✓
0.8× planachromatic
WD 67mm · 배율 범위 6.2×~128×
✓
1× planachromatic
WD 59mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1× planapochromatic
WD 61.5mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1.6× planapochromatic
WD 30.5mm · 배율 범위 12.5×~256×
✓
2× planapochromatic
WD 20.1mm · 배율 범위 15.6×~320×
✓
M205 FA — Stage
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Stage 없음 (Base만 사용)
Base 위에 별도 Stage 없이 사용
Manual XY Stage
수동 Stage · Base 위에 장착
LMT260 Scanning Stage
Base 위에 장착 · LAS X Navigator 자동포함
M205 FA — 형광체
사용할 형광체를 선택해주세요
복수 선택 가능
DAPI
핵 염색 · ~360nm
✓
FITC / GFP
녹색 형광 · ~490nm
✓
TRITC / mCherry
적색 형광 · ~550nm
✓
Cy3
오렌지-적색 · ~550nm
✓
Cy5
근적외 · ~650nm
✓
Cy7
근적외 · ~750nm+ → pE-800 필수
✓
기타
위에 없는 형광체
✓
M205 FA — 형광조명
형광조명 장치를 선택해주세요
단일 선택 — 형광체 기반 권장 자동표시
pE-300white
DAPI · FITC · TRITC — 일반 멀티채널
pE-400max
DAPI ~ Cy5 — 고출력 멀티채널
pE-800
DAPI ~ Cy7 — 근적외 형광 필수
M205 FA — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C 컬러 · 2.3MP
보급형 컬러
K7 컬러 · 7.1MP
고급 올라운더 — 형광 시 우선 추천
K8 흑백 sCMOS · 고감도
고급 형광 전용
M205 FA — LAS X 모듈
필요한 소프트웨어 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능 — Multichannel은 기본 포함
Time-lapse
시간별 연속 이미징
✓
Multichannel Acquisition — 기본 포함
다채널 형광 동시 획득
✓
LAS X Navigator (LMT260 선택 시 자동포함)
Mark & Find · Stitching
✓
2D Analysis
세포 계수·면적·강도 측정
✓
M205 FA 구성 결과
선택하신 구성에 맞는 현미경입니다
M205 FA THUNDER — 명시야 조명
명시야 조명 방식을 선택해주세요
단일 선택
반사식 조명 (LED5000 시리즈)
불투명 샘플·해부·정밀 검사 → LED5000 세부 선택 후 반사식 Base 선택
투과식 조명 (TL Ergo Base)
투명 샘플·슬라이드 → TL3000 또는 TL5000 Ergo 선택
반사식 + 투과식 병용
LED5000 반사식 조명 + TL Ergo Base 조합
M205 FA THUNDER — 반사식 조명 선택
LED5000 조명 모델을 선택해주세요
단일 선택
LED5000 RL — 범용 링조명
균일 조명 · 40 LED · 일반 관찰·문서화
LED5000 SLI — 구즈넥 스팟
방향 자유 설정 · 2암 독립 제어
LED5000 NVI — 수직근접 조명
구멍·홈 내부 검사 특화
LED5000 MCI — 멀티콘트라스트
표면 긁힘·요철 고대비
LED5000 CXI — 동축 조명
반도체 웨이퍼·광택 평탄 샘플
LED5000 HDI — 고확산 FlexiDome
고반사 샘플 무그림자
M205 FA THUNDER — 투과식 Base
투과식 Base를 선택해주세요
단일 선택
TL3000 Ergo
기본형 투과식 베이스 · 투명 샘플·슬라이드·수생생물
TL5000 Ergo
고급형 투과식 베이스 · 더 높은 광량 · 고해상도
M205 FA THUNDER — 반사식 Base
반사식 Base 크기를 선택해주세요
단일 선택
반사식 Base — Medium Size
표준 사이즈 · 일반 실험대 사용
반사식 Base — Large Size
대형 샘플·넓은 작업 공간 필요 시
M205 FA THUNDER — Objective Revolver
Objective Revolver를 선택해주세요
단일 선택
불필요
단일 대물렌즈
2-Objective Revolver
대물렌즈 2개 장착
FluoCombi III
스테레오 + 5× HR 렌즈
M205 FA THUNDER — 대물렌즈
대물렌즈를 선택해주세요
단일 선택
FluoCombi III 선택 시 — 5× HR 렌즈가 기본 포함됩니다. 아래에서 조합할 일반 대물렌즈 1개를 선택해주세요.
0.5× planachromatic
WD 135mm · 배율 범위 3.9×~80×
✓
0.63× planapochromatic
WD 97mm · 배율 범위 4.9×~102×
✓
0.8× planachromatic
WD 67mm · 배율 범위 6.2×~128×
✓
1× planachromatic
WD 59mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1× planapochromatic
WD 61.5mm · 배율 범위 7.8×~160×
✓
1.6× planapochromatic
WD 30.5mm · 배율 범위 12.5×~256×
✓
2× planapochromatic
WD 20.1mm · 배율 범위 15.6×~320×
✓
M205 FA THUNDER — Stage
Stage를 선택해주세요
단일 선택
Stage 없음 (Base만 사용)
Base 위에 별도 Stage 없이 사용
Manual XY Stage
수동 Stage · Base 위에 장착
LMT260 Scanning Stage
Base 위에 장착 · LAS X Navigator 자동포함
M205 FA THUNDER — 형광체
사용할 형광체를 선택해주세요
복수 선택 가능
DAPI
핵 염색 · ~360nm
✓
FITC / GFP
녹색 형광 · ~490nm
✓
TRITC / mCherry
적색 형광 · ~550nm
✓
Cy3
오렌지-적색 · ~550nm
✓
Cy5
근적외 · ~650nm
✓
Cy7
근적외 · ~750nm+ → pE-800 필수
✓
기타
위에 없는 형광체
✓
M205 FA THUNDER — 형광조명
형광조명 장치를 선택해주세요
단일 선택 — 형광체 기반 권장 자동표시
pE-300white
DAPI · FITC · TRITC — 일반 멀티채널
pE-400max
DAPI ~ Cy5 — 고출력 멀티채널
pE-800
DAPI ~ Cy7 — 근적외 형광 필수
M205 FA THUNDER — 카메라
카메라를 선택해주세요
단일 선택
K3C 컬러 · 2.3MP
보급형 컬러
K7 컬러 · 7.1MP
고급 올라운더 — 형광 시 우선 추천
K8 흑백 sCMOS · 고감도
고급 형광 전용
M205 FA THUNDER — LAS X 모듈
필요한 소프트웨어 모듈을 선택해주세요
복수 선택 가능 — Multichannel은 기본 포함
Time-lapse
시간별 연속 이미징
✓
Multichannel Acquisition — 기본 포함
다채널 형광 동시 획득
✓
LAS X Navigator (LMT260 선택 시 자동포함)
Mark & Find · Stitching
✓
2D Analysis
세포 계수·면적·강도 측정
✓
M205 FA THUNDER 구성 결과
선택하신 구성에 맞는 현미경입니다
전문가 Q1
어떤 종류의 현미경이 필요하신가요?
복수 선택 가능 — 여러 종류가 필요하면 모두 선택해주세요
🔬 정립현미경 (Upright)
슬라이드·조직절편·고정 샘플 — DM750, DM1000, DM4B, DM6B
✓
🔭 도립현미경 (Inverted)
세포배양·라이브셀·배양접시 — DMi1, DMi8, THUNDER
✓
🔎 실체현미경 (Stereo)
해부·검사·3D 입체 샘플 — Ivesta 3, M80, M125C, M205
✓
복수 선택 가능
전문가 Q2
주로 사용하는 관찰법을 선택해주세요
복수 선택 가능
💡 명시야 (Brightfield)
가장 기본적인 관찰법 — 염색 샘플, 조직절편, 일반 검사
✓
🔵 위상차 (Phase Contrast)
무염색 세포·미생물 관찰 — 라이브셀 이미징
✓
🌈 형광 (Fluorescence)
GFP·RFP·DAPI 등 형광 표지 — 단백질 발현, 세포 구조 분석
✓
🔶 DIC / IMC
무염색 입체감 강조 — 세포막·핵 윤곽, 미세구조
✓
⚫ 암시야 (Darkfield)
투명·반투명 샘플의 윤곽 강조
✓
💎 편광 (Polarization)
결정·광물·고분자 구조 분석
✓
복수 선택 가능
전문가 Q3
주로 사용하는 대물렌즈 배율은?
복수 선택 가능
복수 선택 가능
전문가 Q4
카메라가 필요하신가요?
이미지 촬영·분석·문서화 필요 여부를 선택해주세요
📷
네, 이미지 촬영·분석이 필요해요
관찰법·현미경 모델에 맞는 카메라를 추천해드려요
👁️
아니요, 눈으로 관찰만 할게요
아이피스(접안렌즈) 전용 구성으로 추천해드려요
전문가 Q5
주로 어떤 샘플 용기를 사용하시나요?
복수 선택 가능합니다
🧫
배양접시 (Dish)
35mm, 60mm, 100mm dish
✓
🧪
플라스크 (Flask)
T-25, T-75, T-175 flask
✓
🔬
멀티웰 플레이트
6well, 12well, 24well, 96well 등
✓
🪟
슬라이드 글라스
표준 슬라이드 (조직·도말)
✓
🪲
벌크 샘플 / 기타
곤충·식물·소재·3D 샘플 등
✓
❓
미정 / 모르겠어요
다양한 용기를 사용하거나 아직 미정
✓
Q2
주로 어떤 샘플을 관찰하시나요?
가장 가까운 카테고리를 선택해주세요
🧫
배양세포 관찰
살아있는 세포, 고정세포, 줄기세포, 오가노이드 등
🔬
조직 · 슬라이드
조직 절편, H&E 염색, 혈액 도말 등
🔭
입체 샘플
모델생물, 동물, 곤충, 식물 등 입체 관찰
🦠
미생물 · 박테리아
세균, 효모, 원생생물 등 미생물 관찰
Q2-1
어떤 세포를 관찰하시나요?
복수 선택 가능합니다
🫧 오가노이드 / 줄기세포 (3D 배양)
3D 입체 배양, 스페로이드, iPSC — THUNDER 이미징 최적
✓
🧫 일반 세포 배양 (2D)
살아있는 세포 또는 고정 세포 — 위상차·형광 관찰
✓
🦠 박테리아 / 미생물
세균, 효모, 마이크로알지 — 고배율 (40x~100x)
✓
복수 선택 가능
Q2-1
어떤 조직·슬라이드 샘플인가요?
복수 선택 가능합니다
🔬 조직 절편 (H&E, 병리)
파라핀·OCT 포매 절편, 병리 슬라이드
✓
💡 면역형광 조직 (IF)
면역형광염색, FISH 슬라이드
✓
🩸 혈액 도말
혈액검사, CBC, 말라리아 등
✓
🧬 세포병리 (Cytology)
자궁경부 도말, 객담세포진 등
✓
복수 선택 가능
Q2-1
어떤 모델 생물을 관찰하시나요?
복수 선택 가능합니다
🪱 C. elegans
선충류, 발생·신경과학 모델
✓
🐟 Zebrafish
제브라피쉬 배아·치어 관찰, 발생생물학
✓
🪰 Drosophila (초파리)
유전학, 발생생물학 모델 생물
✓
🐭 마우스 배아 / 조직
마우스 배아, 뇌 조직 등 소동물
✓
🌱 식물 모델 (애기장대 등)
Arabidopsis thaliana, 식물 발생
✓
복수 선택 가능
Q2-1
어떤 동물·입체 샘플인가요?
복수 선택 가능합니다
🔪 해부 관찰
동물 해부, 장기·조직 육안 관찰
✓
💉 미세주입 / ICSI
난자·배아 미세조작, IVF
✓
🪰 곤충 / 식물 관찰
플라이 소팅, 형질전환체 선별
✓
📦 3D 입체 샘플
두꺼운 조직, 입체 구조물 관찰
✓
복수 선택 가능
Q2-1
어떤 소재·산업 샘플인가요?
복수 선택 가능합니다
💻 반도체 · PCB
회로기판, 전자부품 검사·재작업
✓
🔩 금속 · 재료
균열, 표면 분석, 품질관리(QC)
✓
💎 보석 · 광물
보석 감정, 광물 분석
✓
🔍 법의학 · 환경
법의학 검사, 환경 샘플 분석
✓
복수 선택 가능
Q2-1
어떤 식물·기타 샘플인가요?
복수 선택 가능합니다
🌿 식물 조직
잎, 줄기, 뿌리 절편 관찰
✓
🦠 미생물 · 조류
세균, 효모, 마이크로알지, 원생생물
✓
🌊 환경 샘플
토양, 물, 공기 중 입자 분석
✓
🍎 식품 · 농업
식품 품질검사, 농업 해충 분석
✓
복수 선택 가능
Q2-1
주로 어떤 환경에서 관찰하시나요?
관찰 환경에 따라 최적의 현미경이 달라져요
🔬 슬라이드에 도말하여 관찰
그람염색, 균 동정, 고배율 단독 관찰 — 정립현미경 (40x~100x)
🧫 배양접시(Dish)에서 세포와 함께 관찰
세포·박테리아 상호작용, 라이브 관찰 — 도립현미경
Q2-1
주로 어떤 환경에서 관찰하시나요?
관찰 환경에 따라 최적의 현미경이 달라져요
🔬 슬라이드에 도말하여 관찰
그람염색, 균 동정, 고배율 단독 관찰 — 정립현미경 (40x~100x)
🧫 배양접시(Dish)에서 세포와 함께 관찰
세포·박테리아 상호작용, 라이브 관찰 — 도립현미경
Q2-1
슬라이드 전체를 스캔하고 싶으신가요?
Whole Slide Imaging — 슬라이드 전체를 고해상도로 디지털화하는 방식이에요
🖥️
네, 슬라이드 전체를 스캔하고 싶어요
Whole Slide Scan — 슬라이드 전체를 파노라마 이미지로 디지털화
🔬
아니요, 특정 부위만 관찰할게요
슬라이드의 특정 부분만 고배율로 관찰
Q2-2
자동 스캔이 필요하신가요?
스캔 방식에 따라 최적의 시스템이 달라져요
🤖
네, 완전 자동 스캔이 필요해요
슬라이드 1~8장을 자동으로 순차 스캔 — 높은 처리량 필요
🖐️
아니요, 수동 스캔으로도 충분해요
고가 자동 스캐너 대비 가성비 좋은 수동 스캔 방식
Q2-3
어떤 관찰법으로 스캔하시나요?
관찰법에 따라 최적의 시스템이 달라져요
🔲
명시야 (H&E, 일반 병리 염색)
H&E 염색, Masson's trichrome 등 일반적인 조직병리 슬라이드
💡
형광 (면역형광염색, IF)
면역형광염색(IF), FISH 등 형광 슬라이드 스캔
Q3
어떤 샘플 용기를 사용하시나요?
복수 선택 가능합니다
🔲 슬라이드 글라스
일반 유리 슬라이드에 샘플 올려 관찰
✓
🫙 배양접시 (Dish)
35mm, 60mm, 100mm dish
✓
🧪 T-Flask
T25, T75, T175 플라스크
✓
⬛ Microplate
6well, 12well, 24well, 96well 등
✓
복수 선택 가능
실체현미경 Q1
어느 정도의 배율이 필요하신가요?
작업 내용에 따라 적합한 배율 범위가 달라져요
🏫
교육용 (8x ~ 35x)
학교·교육기관 실습용 — EZ4 시리즈 (EZ4 E, EZ4 open, EZ4 10×/16×)
🔍
저배율 (6x ~ 55x)
해부, 육안 검사, 플라이 소팅 — A60, Ivesta 3, M60/M80
🔎
중배율 (8x ~ 100x)
정밀 관찰, 미세주입, IVF, 반도체 검사 — M125C
🧬
고배율 (7x ~ 160x)
고급 연구, 재료과학, 형광 이미징 — M205C/A, M205 FA/FCA, MZ10 F
실체현미경 Q2
어떤 조명 방식이 필요하신가요?
복수 선택 가능 — 형광은 투과·반사와 함께 선택할 수 있어요
💡
반사식 (Incident Light)
불투명 샘플, 입체 물체, 해부·검사·소팅 등 위에서 빛을 조사 — 가장 일반적인 구성
✓
🔆
투과식 (Transmitted Light)
투명 샘플·슬라이드·수생생물 등 아래에서 빛을 투과 — TL3000/TL5000 Ergo 베이스 추가
✓
🔬
형광 (Fluorescence)
GFP·RFP·DAPI 등 형광 표지 관찰 — 투과·반사와 함께 선택 가능. MZ10F 또는 M205 FA/FCA 구성
✓
복수 선택 가능
실체현미경 Q3
스탠드 형태는 어떻게 필요하신가요?
작업 환경과 샘플 크기에 따라 달라져요
🏛️
일반 컬럼 스탠드 (Focusing Column + Base)
투과식·반사식 베이스와 결합. 안정적인 고정형 — 가장 일반적인 구성
🔄
Swing Arm Stand
팔을 수평으로 스윙해 대형 샘플 위에서 자유롭게 이동 관찰 — A60 S
🦾
Flexible Arm Stand
자유롭게 방향 조절. 좁은 공간, 테이블 클램프 고정 — A60 F
❓
잘 모르겠어요
전문가 추천 기본 구성으로 안내받을게요
실체현미경 Q4
카메라가 필요하신가요?
촬영·문서화 필요 여부만 선택해주세요 — 현미경 모델에 맞는 카메라를 자동으로 추천해드려요
📷
네, 이미지 촬영·문서화가 필요해요
추천 현미경 모델에 최적화된 카메라를 자동으로 안내해드려요
👁️
아니요, 눈으로 관찰만 할게요
접안렌즈 전용 기본 구성으로 추천해드려요
실체현미경 Q2 (교육용)
디지털 이미지 촬영·공유가 필요하신가요?
카메라 내장 모델과 일반 모델로 나뉘어요
📷
네, 이미지 촬영·문서화가 필요해요
Leica EZ4 E — 5MP 카메라 내장, PC/Mac 연결 촬영·측정, SD 카드 저장, HDMI 출력 지원
🔭
아니요, 눈으로 관찰만 할게요
카메라 없는 기본 교육용 — EZ4 시리즈
Q4
어떤 관찰법이 필요하신가요?
복수 선택 가능합니다
명시야 (Brightfield)
가장 기본적인 관찰법. 모든 현미경 기본 포함
✓
암시야 (Darkfield)
투명한 샘플의 윤곽을 밝게 표현
✓
위상차 (Phase Contrast)
염색 없이 투명한 세포도 선명하게 관찰
✓
DIC / IMC
입체감 있는 고해상도 관찰
✓
편광 (Polarization)
결정 구조, 섬유 조직 관찰
✓
형광 (Fluorescence)
형광 표지, 면역형광 관찰
✓
복수 선택 가능
Q5
대물렌즈 배율은 몇 배가 필요하신가요?
필요한 배율을 모두 선택해주세요 (복수 선택 가능)
1.25x / 2.5x
넓은 영역 빠른 스캔
✓
4x / 5x
샘플 전체 분포 확인
✓
10x
기본 세포 관찰
✓
20x
세포 형태 상세 관찰
✓
40x
세포 내부 구조 관찰
✓
63x
고급 연구용 — 세포 소기관 수준 관찰
✓
100x
최고 배율 — 오일 이머전 방식
✓
💡 고배율 대물렌즈 안내 — 63x 또는 100x 대물렌즈는 등급에 따라 가격 차이가 크며 별도 비용이 추가됩니다. 추천 가격에는 포함되지 않으니 견적 문의 시 꼭 말씀해주세요.
복수 선택 가능
Q6
카메라를 장착하실 건가요?
이미지 촬영 및 분석이 필요하신지 선택해주세요
👁️
아니요, 눈으로만 관찰할게요
이미지 촬영 없이 직접 관찰만 필요해요
📷
네, 기본 이미지 촬영이 필요해요
사진 저장, 스케일바 삽입, 기본 분석 정도면 충분해요 → Flexacam / K3 시리즈
🎨
네, 고해상도 컬러 카메라가 필요해요
고품질 컬러 이미지, 빠른 프레임 속도 → K5C / K7 시리즈
⚡
네, 형광용 흑백(Monochrome) 카메라가 필요해요
형광 신호 감도 최적화 → K3M / K5 / K8 sCMOS
Q7
희망하시는 예산 범위는 어느 정도인가요?
아래 금액은 모두 부가세(VAT) 별도 기준입니다 — 구성에 따라 실제 견적은 달라질 수 있어요. 예산 가이드로 활용해주세요.
💰
1,000만원 미만
교육용·입문용 모델 위주
💰
1,000만 ~ 3,000만원
연구용 기본 구성
💰
3,000만 ~ 1억원
연구용 중급~고급 구성
💰
1억 ~ 3억원
고급 연구용 시스템
💰
3억원 이상
THUNDER 고급 이미징 시스템 구성 (DM6B with THUNDER 등)
🤔
아직 정해지지 않았어요
추천 모델을 먼저 확인하고 예산을 결정할게요
🎯
맞춤 현미경 추천 결과
💡 조명 구성 선택
💡 예산 안내 — 추천 모델은 선택하신 예산 범위를 기준으로 한 가이드입니다. 대물렌즈·카메라·소프트웨어 등 세부 구성에 따라 실제 견적은 달라질 수 있습니다. 또한 옵션 구성에 따라 예산 범위를 초과할 수 있으니 정확한 견적은 전문 상담원이 안내해드립니다.
추천 제품
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MICROSCOPE FINDER 란?
현미경은 모델 하나가 곧 완성품이 아닙니다.
현미경 종류, 관찰법, 대물렌즈, 조명장치, 카메라 장착 여부, 소프트웨어 등 수백 가지 구성요소의 조합으로 완성되기 때문에, 같은 모델이라도 연구 목적에 따라 전혀 다른 시스템이 됩니다.
📋 Microscope Finder로 할 수 있는 것
몇 가지 질문만으로 관찰 목적·샘플·용도에 맞는 현미경 구성을 추천해드립니다. 전문 지식이 없어도 괜찮아요.
📩 상담 연결하기
문의하기를 누르면 선택하신 구성 내용이 함께 전달되어 더 정확하고 빠른 상담이 가능합니다.
⚠️ 참고사항
추천 결과는 참고용이며, 실제 구성과 가격은 상담을 통해 최종 확인하시기 바랍니다.
📖 현미경이 처음이시라면
정립·도립·실체현미경의 차이, 형광 이미징 원리 등 기초 정보를 아래 지식 섹션에서 확인하실 수 있습니다.
질문에 답할수록 추천이 정밀해져요
MICROSCOPE KNOWLEDGE ver 1.0
현미경 기초 지식 배우기
현미경 선택과 활용에 필요한 핵심 지식을 주제별로 정리했습니다
01 현미경 종류 및 분류
🔬 정립현미경 (Upright Microscope)
재물대(Stage)를 기준으로 대물렌즈(Objective)가 위에 위치하고, 조명은 아래쪽에서 빛을 올려보내는 방식입니다.
슬라이드 글라스 위에 샘플을 올려놓고 커버글라스로 덮은 슬라이드 표본을 관찰하는데 최적화되어 있습니다.
조직 절편, 혈액도말, 미생물, 병리조직 슬라이드 검사에 주로 활용됩니다.
슬라이드 글라스 위에 샘플을 올려놓고 커버글라스로 덮은 슬라이드 표본을 관찰하는데 최적화되어 있습니다.
조직 절편, 혈액도말, 미생물, 병리조직 슬라이드 검사에 주로 활용됩니다.
⚠️ 주의 — Dish, T-flask, Microplate 같은 세포배양 용기 내 세포 관찰은 불가능합니다. 용기 벽 때문에 대물렌즈가 근접할 수 없고, 배양액에 오염될 수 있기 때문입니다.

정립현미경 — 대물렌즈가 재물대 위에 위치

정립현미경 구성 예시
🔬 도립현미경 (Inverted Microscope)
재물대(Stage)를 기준으로 대물렌즈(Objective)가 아래에 위치하고, 투과식 조명은 위쪽에서 빛이 아래로 투과하는 방식입니다.
Dish, T-flask, Microplate와 같은 세포배양 용기 바닥에 붙어 자라는 살아있는 세포 관찰에 최적화되어 있습니다.
슬라이드 표본도 관찰 가능하며, 위상차(Phase Contrast) 관찰법이 기본 포함됩니다.
Dish, T-flask, Microplate와 같은 세포배양 용기 바닥에 붙어 자라는 살아있는 세포 관찰에 최적화되어 있습니다.
슬라이드 표본도 관찰 가능하며, 위상차(Phase Contrast) 관찰법이 기본 포함됩니다.
💡 대물렌즈 구성 차이 — 정립현미경: 4x/10x/20x/40x/100x | 도립현미경: 4x/10x/20x/40x (배양 용기 바닥 두께를 통과해야 하므로 Long Working Distance 대물렌즈 필요)

도립현미경 — 대물렌즈가 재물대 아래에 위치

도립현미경 구성 예시
🔬 실체현미경 (Stereo Microscope)
두 눈이 서로 다른 각도로 샘플을 바라보는 원리를 이용해 입체감 있는 3D 이미지를 제공합니다.
복합현미경(정립/도립)보다 배율은 낮지만, 넓은 시야와 긴 작동거리로 해부·동물실험·정밀 조작·산업 검사에 최적입니다.
투과식(Transmitted) + 반사식(Incident) 조명을 모두 사용 가능하며, 형광 모듈 장착도 가능합니다.
복합현미경(정립/도립)보다 배율은 낮지만, 넓은 시야와 긴 작동거리로 해부·동물실험·정밀 조작·산업 검사에 최적입니다.
투과식(Transmitted) + 반사식(Incident) 조명을 모두 사용 가능하며, 형광 모듈 장착도 가능합니다.

Greenough 타입 실체현미경

CMO 타입 실체현미경
관찰법 등급 (비용 순)
명시야
→
위상차
→
DIC
→
형광
→
공초점
💡 현미경 명명법 — 명시야는 기본이라 이름에서 생략. 보유한 관찰법 중 가장 고급 관찰법이 이름을 결정하며, 나머지 특별한 관찰법은 "포함"으로 별도 표기합니다.
대부분의 도립현미경은 위상차를 기본으로 포함합니다.
도립현미경 + 명시야 + 위상차 → 위상차도립현미경
도립현미경 + 명시야 + 위상차 + 형광 → 형광도립현미경
정립현미경 + 명시야 + 위상차 + DIC + 형광 → 형광정립현미경 (DIC 포함)
대부분의 도립현미경은 위상차를 기본으로 포함합니다.
도립현미경 + 명시야 + 위상차 → 위상차도립현미경
도립현미경 + 명시야 + 위상차 + 형광 → 형광도립현미경
정립현미경 + 명시야 + 위상차 + DIC + 형광 → 형광정립현미경 (DIC 포함)
💡 각 관찰법의 원리와 활용법이 궁금하다면 →
02 현미경 초점 맞추기
가장 낮은 배율 (4x 또는 10x) 부터 시작
조동 나사(큰 손잡이)로 샘플이 보일 때까지 올린 후, 미동 나사(작은 손잡이)로 선명하게
고배율로 바꿀 때는 미동 나사만 사용 — 렌즈가 샘플에 닿지 않도록 주의
도립현미경은 아래에서 위로 올리며 초점 찾기
고급 모델(DMi8 등): 전동 오토포커스 — 타임랩스 포커스 드리프트 방지에 필수
💡 실체현미경 꿀팁 — 최고배율에서 먼저 초점을 잡으면 낮은 배율로 내려도 선명하게 유지됩니다.
01 NA (Numerical Aperture, 개구수)
NA = n × sin(α)
n: 이미징 매질 굴절률 / α: 개구각의 절반
n: 이미징 매질 굴절률 / α: 개구각의 절반
| 매질 | 굴절률 (n) | NA 최대값 |
|---|---|---|
| 공기 (Dry) | 1.0 | 최대 0.95 |
| 물 (Water) | 1.33 | 최대 1.2 |
| 오일 (Oil) | 1.52 | 최대 1.45 |
NA ↑ → 해상도 향상, 빛을 더 많이 모음, 심도(DOF) 얕아짐
NA ↑ ↔ 작동거리 ↓ (반비례 관계)
해상도는 대물렌즈 NA뿐 아니라 콘덴서 NA도 함께 고려해야 함
NA(개구수) 개념 — 대물렌즈가 샘플에서 빛을 모으는 능력
02 해상도 (Resolution, 분해능)
정의: 두 지점을 별도의 개체로 구별할 수 있는 최소 거리
영향 요소: 대물렌즈 NA, 콘덴서 NA, 빛의 파장, 광학계 정렬
Abbe's Diffraction Limit
· Lateral(XY): d = λ / (2 × NA)
· Axial(Z): d = 2λ / NA²
실제 한계: Lateral ~200nm / Axial ~500nm
계산 예시(514nm, NA 1.45 oil): Lateral 177nm / Axial 488nm
· Lateral(XY): d = λ / (2 × NA)
· Axial(Z): d = 2λ / NA²
실제 한계: Lateral ~200nm / Axial ~500nm
계산 예시(514nm, NA 1.45 oil): Lateral 177nm / Axial 488nm
💡 해상도를 높이는 방법 — 높은 NA 렌즈, 짧은 파장, Immersion Oil, 콘덴서 NA 향상
💡 광학 한계 극복 — STELLARIS STED(100nm 이하 초해상도), THUNDER LIGHTNING(와이드필드로 공초점 수준)
03 심도 (Depth of Field, DOF)
정의: 초점을 잡았을 때 입체 샘플이 어느 깊이까지 선명하게 보이는 범위
배율 ↑ → 심도 얕아짐 / 배율 ↓ → 심도 깊어짐
저배율(5x): 조동나사로 과감하게 초점 가능 / 고배율(40x, 100x): 미동나사로 조심스럽게
💡 두꺼운 샘플 전체를 선명하게 보려면 → EDOF(Extended Depth of Field) 소프트웨어 모듈 활용
04 작동거리 vs 초점거리
초점거리(Focal Length): 광학 설계상 이론값
작동거리(WD): 초점 시 대물렌즈 전면에서 커버슬립까지 — 실제 사용 기준
WD는 대물렌즈 배럴에 표기되지 않음 → 제조사·판매업체 확인 필요

Working Distance (작동거리)

Focal Length (초점거리)
05 LWD (Long Working Distance) 대물렌즈
도립현미경에서 20x 이상은 LWD 렌즈 사용이 기본
이유: Cell culture dish·T-flask 바닥(약 1mm) → 긴 작동거리 필요
표기: 배율 앞에
L 표기 (예: L 20x, L 40x, L 63x)| 렌즈 | NA | WD |
|---|---|---|
| 일반 20x | 0.40 | 0.39mm |
| LWD 20x | 0.35 | 6.9mm |
06 Immersion Oil (이머전 오일)
대물렌즈와 커버슬립 사이에 넣는 특수 오일 (굴절률 1.515)
목적: 공기(n=1.0) 대신 오일로 채워 NA를 높여 해상도와 밝기 향상
주로 고배율(63x, 100x)에서 사용
Immersion Oil 사용 원리 — 굴절 손실을 줄여 NA 향상
⚠️ 주의사항
· OIL 표기 대물렌즈에만 사용
· 사용 후 전용 클리너로 즉시 닦기
· 건조 렌즈(Dry lens)에 절대 사용 금지
· 도립현미경 100x oil: 일반 플라스틱 dish 불가 → Glass Bottom Dish/Plate 필수
· OIL 표기 대물렌즈에만 사용
· 사용 후 전용 클리너로 즉시 닦기
· 건조 렌즈(Dry lens)에 절대 사용 금지
· 도립현미경 100x oil: 일반 플라스틱 dish 불가 → Glass Bottom Dish/Plate 필수
💡 렌즈 닦는 방법 — 70% 에탄올을 면봉에 묻혀, 렌즈 한가운데서 바깥쪽으로 원을 그리듯 문질러 먼지나 오일을 제거합니다. 중앙에서 시작해야 오염물이 가장자리로 밀려나며, 같은 면봉을 반복 사용하지 않습니다.
01 눈으로 관찰할 때
M_TOT (VIS) = M_O × q × M_E
M_O: 대물렌즈 배율
q: 중간배율요소 (Zoom, Magnification Changer)
M_E: 접안렌즈 배율
M_O: 대물렌즈 배율
q: 중간배율요소 (Zoom, Magnification Changer)
M_E: 접안렌즈 배율
| 예시 | 계산 | 결과 |
|---|---|---|
| 도립현미경 | 대물 10x × Mag.Changer 1.6x × 접안 10x | 160배 |
| 실체현미경 (CMO 1x) | 줌배율 0.61~5.5 × 접안 10x | 6.1~55배 |
02 카메라 + 모니터로 관찰할 때
Step 1. 카메라 센서 투영 배율
M_TOT (PROJ) = M_O × q × M_PHOT (C-mount 어댑터 배율)
Step 2. Pixel Size Ratio
= 모니터 pixel 크기 ÷ 카메라 sensor pixel 크기
Step 3. 모니터 표시 배율
M_DIS = M_TOT (PROJ) × Pixel Size Ratio
M_TOT (PROJ) = M_O × q × M_PHOT (C-mount 어댑터 배율)
Step 2. Pixel Size Ratio
= 모니터 pixel 크기 ÷ 카메라 sensor pixel 크기
Step 3. 모니터 표시 배율
M_DIS = M_TOT (PROJ) × Pixel Size Ratio
| 조건 | 계산 | 결과 |
|---|---|---|
| 대물 40x · C-mount 0.5x · 카메라 sensor pixel 4.5㎛ · 27" 모니터 pixel 311㎛ |
Step1. M_TOT(PROJ) = 40 × 0.5 = 20x Step2. Pixel Size Ratio = 311 ÷ 4.5 = 69.1 Step3. M_DIS = 20 × 69.1 = 약 1,382배 |
~1,382배 |
| 대물 10x · C-mount 0.5x · 카메라 sensor pixel 4.5㎛ · 27" 모니터 pixel 311㎛ |
Step1. M_TOT(PROJ) = 10 × 0.5 = 5x Step2. Pixel Size Ratio = 311 ÷ 4.5 = 69.1 Step3. M_DIS = 5 × 69.1 = 약 346배 |
~346배 |
💡 중요 — 같은 현미경이라도 카메라·모니터 종류에 따라 모니터 배율이 달라집니다.
💡 실용 팁 — 연구자들은 배율보다 Scale bar로 이미지 크기를 표현하는 것이 더 정확하고 범용적입니다.
01 형광 (Fluorescence) 원리
형광체(Fluorophore)가 짧은 파장(높은 에너지) 빛을 흡수 → 들뜬 상태 → 더 긴 파장의 빛을 방출
Stokes Shift: 흡수·방출 파장의 차이 — 이 덕분에 여기광과 형광 신호를 필터로 분리
에피형광(Epi-fluorescence): 여기광과 검출이 같은 대물렌즈 방향에서 이루어짐
형광 원리 — Excitation(여기) → Excited state → Emission(방출), Stokes Shift 발생
광학 경로
① 광원(레이저/LED/수은등)
② 여기필터 (Excitation Filter)
③ 이색성 거울 (Dichroic Mirror, 45°)
④ 대물렌즈 → 샘플
⑤ 방출필터 (Emission Filter)
⑥ 카메라 / PMT
① 광원(레이저/LED/수은등)
② 여기필터 (Excitation Filter)
③ 이색성 거울 (Dichroic Mirror, 45°)
④ 대물렌즈 → 샘플
⑤ 방출필터 (Emission Filter)
⑥ 카메라 / PMT
02 형광 필터 큐브
Excitation Filter: 형광염료를 여기시키는 파장만 통과
Dichroic Mirror: 여기광은 반사(샘플로), Emission 파장은 투과(카메라로)
Emission Filter: 형광 방출 파장만 검출기로 전달
BP(Band Pass): 중심파장/대역폭 — 예: BP 560/40 → 540~580nm 통과LP(Long Pass): 표기 파장 이상의 긴 파장 모두 통과 — 예: LP 585 → 585nm 이상| 필터 | Excitation | Dichroic | Emission |
|---|---|---|---|
| DAPI | BP 350/50 | LP 400 | BP 460/50 |
| GFP | BP 470/40 | LP 495 | BP 525/50 |
| TXR | BP 560/40 | LP 585 | BP 630/75 |
| Cy5 | BP 620/60 | LP 660 | LP 665 |
형광 필터 큐브 구조 — Excitation Filter + Dichroic Mirror + Emission Filter
⚠️ 주의 — 필터큐브는 현미경 제조사·모델마다 크기/모양이 다릅니다. 반드시 확인 후 구매하세요.
03 노출시간 vs 광량 조절
노출시간(Exposure Time): 형광 신호가 강하면 짧게 / 약하면 길게
광량(Light Power): 신호 약할 때 광량 높이고 노출시간은 줄이는 방향으로 조절
⚠️ 최악의 조합
노출시간 길게 + 광량 높게
→ Photobleaching (형광 소실)
→ Phototoxicity (세포 손상)
노출시간 길게 + 광량 높게
→ Photobleaching (형광 소실)
→ Phototoxicity (세포 손상)
💡 신호가 약할 때 체크리스트 — 염색 상태 / 여기 파장 매칭 / 필터 적합성 / 카메라 QE 확인
04 주요 형광 기법
| 기법 | 원리 / 용도 |
|---|---|
| 와이드필드 | 가장 기본. 전체 시야를 한 번에 촬영 |
| 공초점 (CLSM) | 초점면 외 빛 차단 → 3D 광학 절편, 세포 소기관 위치 파악 |
| FLIM | 형광 수명 측정으로 분자 환경·상호작용 분석 |
| TIRF | 세포 표면 근처 형광체만 선택적 관찰 |
| FRAP | 광표백 후 분자 확산 속도 측정 |
| FRET | 두 형광체가 가까울 때 에너지 전달 → 분자 상호작용 |
| STED / PALM / STORM | 회절 한계 극복, 100nm 이하 초해상도 |
FLIM / TauSense — 형광 수명 이미징
형광체의 수명(Lifetime, τ)을 측정해 이미지화하는 기법. 형광 농도·광량과 무관한 고유 값으로, 분자 환경·상호작용 분석에 강력합니다.






TauSense 이미징 예시 — 형광 수명값(τ)으로 색상 표현, Intensity 이미지와 비교
05 외장 필터휠 (EFW)
용도: 형광 이미징 필터 전환 속도를 극적으로 높이기 위한 장치
내장 필터 터렛 (초 단위 전환, 진동 있음) vs EFW (10~30ms, 무진동)
필요한 경우: Calcium imaging(Fura2), FRET / Photobleaching·Phototoxicity 민감 샘플 / 멀티포지션 고속 이미징
최적 구성: 독립 파장 LED 광원 + Multiband Filter(Quad Filter) + EFW

EFW 설치 예 — 카메라 앞에 장착

EFW 구성 — LED + Quad Filter + EFW
EFW 필터 전환 속도 — 10~30ms 초고속 무진동 전환
💡 성능 예시 — 96 well plate × well당 1포지션 × Z 10장 × 3채널 = 3분 30초 이내 가능
01 정립현미경 재물대
기본 구성: 세라믹 코팅 판 + Specimen Holder + Object Guide(XY 미세조절)
Rotating Stage: 최대 110도 회전. H&E 조직 슬라이드 방향 조절에 유용 / 편광현미경: 360도 회전
Mechanical Stage
→
Motorized Stage
→
Scanning Stage
💡 Scanning Stage — 슬라이드 1~8개 장착 가능. 소프트웨어 연동 자동 이미징+스티칭

정립현미경 Motorized Stage

8 Slide Scanning Stage — DM6B 장착 예
02 도립현미경 재물대
| 종류 | 특징 / 용도 |
|---|---|
| Fixed Stage | 현미경 고정형. 88mm 원형 insert. 대형 Dish·T-flask 전반 관찰 |
| Manual 3-Plate Stage | 고배율에서도 진동 없이 빠른 스캐닝 |
| Motorized / Scanning Stage | 다양한 속도·정밀도 모델. 소프트웨어 연동 자동화 이미징 |

Fixed Stage

Manual 3-Plate Stage

Scanning Stage
💡 Fixed Stage + Object Guide 조합 — Fixed Stage에 Object Guide를 장착하면 아래 악세사리를 사용할 수 있습니다.
Manual 3-Plate Stage와 Scanning Stage에도 전용 악세사리가 별도 제공됩니다.
Manual 3-Plate Stage와 Scanning Stage에도 전용 악세사리가 별도 제공됩니다.
03 도립현미경 재물대 악세사리
재물대 자체가 아닌, Fixed Stage 또는 Manual/Scanning Stage에 장착하여 사용하는 샘플 고정 악세사리입니다.
| 악세사리 | 장착 재물대 | 용도 |
|---|---|---|
| Universal Holding Frame | Fixed Stage (Object Guide 장착 시) Manual 3-Plate Stage Scanning Stage |
슬라이드 글라스 · 35mm · 60mm Dish 등 다목적 샘플 고정 |
| Microplate Holding Frame | Fixed Stage (Object Guide 장착 시) Manual 3-Plate Stage Scanning Stage |
6well ~ 1536well 멀티웰 플레이트 고정 |

Object Guide (XY 미세조절장치)

다양한 Holding Frame 종류
04 라이브셀 이미징용 환경 제어
Cage Incubator / Stage Top Incubator: 온도·습도·CO₂ 유지하며 이미징
Heating Stage / Heating Insert (Thermo plate): 지속적 온도 유지
IVF: ICSI용·IMSI용·겸용 Heating Plate 선택

Stage Top Incubator 설치 예

Cage Incubator 장착된 DMi8
01 소프트웨어 종류
| 종류 | 특징 |
|---|---|
| 기본 소프트웨어 | 카메라 구매 시 무료 제공. 이미지 저장·관리, 스케일바, 기초 측정. 제조사 간 호환 불가 |
| 구동 소프트웨어 모듈 | Z-stack, 멀티채널 자동 전환, Stitching, Time-lapse (자동형 전용) |
| 분석 소프트웨어 | 자동 감지 + 정량 분석, 2D·3D 분석, AI·딥러닝 기반 |
02 LAS X
라이카 현미경 통합 플랫폼 소프트웨어
Z-stack / 타임랩스 / 멀티채널 / 스티칭 / 3D / THUNDER 클리어링
LAS X Navigator: H&E 조직 모자이크 이미지 생성
연동: DMi8, STELLARIS, DM4B/6B, Mica 등 전 연구용 제품
03 Enersight
루틴 검사·문서화·산업·교육용
3가지 모드: OSD(HDMI 직결) / Mobile(iOS/Android) / Desktop
라이브 측정, Snap-to-edge, HDR, 네거티브, 바코드, EDOF, 스티칭
호환: FLEXACAM C5/i5, Ivesta 3 통합형
04 Aivia AI 이미지 분석
AI 기반 현미경 이미지 분석 플랫폼 — 코딩 불필요
Segment by Example: Cellpose 기반 자동 세포 분할
2D~5D 시각화 및 분석, 3D 분석 최대 69% 고속화
20개 사전 학습 딥러닝 모델, 45종 이상 파일 포맷 지원
구독 플랜: Go(기본) / Elevate(전문) / Apex(완전 플랫폼)
01 주요 형광염료 파장표
형광 이미징 실험 설계 시 사용하는 형광염료의 Ex/Em 파장을 확인하고, 적합한 필터 큐브와 광원을 선택하세요.
| 색상 계열 | 주요 염료 | Ex (nm) | Em (nm) |
|---|---|---|---|
| ■ UV/보라 | DAPI | 358 | 463 |
| ■ UV/보라 | Hoechst 33258 | 352 | 461 |
| ■ UV/보라 | Hoechst 33342 | 352 | 455 |
| ■ UV/보라 | Alexa Fluor 350 | 346 | 445 |
| ■ UV/보라 | Pacific Blue | 404 | 455 |
| ■ UV/보라 | BFP (Blue FP) | 383 | 448 |
| ■ UV/보라 | CFP (Cyan FP) | 433 | 475 |
| ■ UV/보라 | eCFP | 434 | 477 |
| ■ 청록 | Alexa Fluor 488 | 493 | 520 |
| ■ 청록 | FITC | 495 | 517 |
| ■ 녹색 | eGFP | 488 | 509 |
| ■ 녹색 | GFP | 395/475 | 509 |
| ■ 녹색 | Fluo-4 | 494 | 516 |
| ■ 녹색 | Calcein AM | 495 | 515 |
| ■ 녹색 | SYTO 9 | 485 | 498 |
| ■ 녹색 | MitoTracker Green | 490 | 516 |
| ■ 황색 | eYFP | 514 | 526 |
| ■ 황색 | Venus | 515 | 528 |
| ■ 주황 | Cy3 | 549 | 562 |
| ■ 주황 | TRITC | 550 | 573 |
| ■ 주황 | Alexa Fluor 555 | 553 | 568 |
| ■ 주황 | Alexa Fluor 546 | 556 | 573 |
| ■ 주황 | TMRE | 549 | 574 |
| ■ 주황 | MitoTracker Orange | 551 | 576 |
| ■ 적색 | mCherry | 587 | 610 |
| ■ 적색 | Alexa Fluor 568 | 576 | 603 |
| ■ 적색 | Alexa Fluor 594 | 590 | 617 |
| ■ 적색 | Texas Red | 596 | 613 |
| ■ 적색 | PI (Propidium Iodide) | 535 | 617 |
| ■ 적색 | MitoTracker Red CMXRos | 579 | 599 |
| ■ 적색 | RFP (Red FP) | 555 | 584 |
| ■ 적색 | DsRed | 558 | 583 |
| ■ 진적색 | Cy5 | 646 | 664 |
| ■ 진적색 | Alexa Fluor 647 | 653 | 669 |
| ■ 진적색 | Alexa Fluor 633 | 632 | 647 |
| ■ 진적색 | TO-PRO-3 | 642 | 661 |
| ■ 진적색 | iRFP670 | 643 | 670 |
| ■ 근적외선 | Cy5.5 | 673 | 692 |
| ■ 근적외선 | Alexa Fluor 680 | 679 | 702 |
| ■ 근적외선 | Alexa Fluor 700 | 696 | 719 |
| ■ 근적외선 | Cy7 | 743 | 767 |
| ■ 근적외선 | Alexa Fluor 750 | 752 | 779 |
| ■ 근적외선 | iRFP720 | 690 | 720 |
| ■ 근적외선 | iRFP760 | 730 | 760 |
💡 참고 — Ex/Em 파장은 제조사·실험 조건에 따라 다소 차이가 있을 수 있습니다. 필터 선택 시 사용하는 형광염료의 정확한 스펙시트를 확인하세요.
01 실체현미경 타입 비교

Greenough 타입 — 2개의 독립 광로, 일체형 본체

CMO 타입 — 하나의 대물렌즈 + 2개의 평행 광로
| 구분 | Greenough 타입 | CMO 타입 |
|---|---|---|
| 광학 구조 | 2개의 독립 광로 (10~16° 각도) | 공통 대물렌즈 + 2개 평행 광로 |
| 본체 | 경통 일체형 | 경통·본체 분리 가능 |
| 심도(DOF) | 더 깊음 — 입체감 우수 | 상대적으로 얕음 |
| 해상도 | 상대적으로 낮음 | 더 높음 |
| 확장성 | 제한적 | 다양한 모듈 장착 가능 |
| 가격 | 상대적으로 저렴 | 상대적으로 고가 |
| 대표 모델 | Leica Ivesta 3 Series | Leica M50/M60/M80 |

Greenough 대표모델 — Leica Ivesta 3 Series

CMO 대표모델 — Leica M50 / M60 / M80
02 실체현미경 조명 종류
투과식 베이스 (Transmitted Light Base)
반사경(Reflector)이 달린 투과식 베이스를 돌리면 명시야·암시야·Rotterman Contrast 관찰 가능

투과식 베이스

Zebrafish: 명시야 · Rotterman · 암시야
Ring Light Illumination
대물렌즈에 장착. 균일한 빛. 동물실험·넓은 샘플에 적합. 1x 이하 저배율 대물렌즈에만 사용 가능

Ring Light Illumination

Ring Light 장착 예 (A60F)
Spot Light (Gooseneck) Illumination
2개의 Gooseneck arm으로 방향·각도 자유롭게 조절. Working Distance에 제한 없음. 다양한 샘플에 적용 가능

Spot Light (Gooseneck)

Spot Light 장착 예
Near Vertical Illumination
거의 수직으로 빛이 떨어져 그림자 최소화. 패인 홈·구멍 내부 관찰에 최적



Coaxial Illumination
현미경 본체와 경통 사이에 장착. 광축과 동일하게 빛이 이동. 광택·평면·반사 심한 샘플(PCB, 금속 표면)에 적합


Diffused / Highly Diffused Illumination
그림자·눈부심 없이 균일한 빛. 오목하거나 모서리 많은 샘플·카메라 이미징에 적합

Diffused Illumination

Highly Diffused Illumination

균일한 빛으로 이미징
Stand (스탠드) 종류

일반 스탠드 — Base + Focusing Column

Flexible Arm Stand — 클램프 고정, Stereotaxic 실험에 최적

Swing Arm Stand — 다양한 암 길이 선택
Floor Stand — 주로 수술현미경·고급 동물실험 장비에 사용
👁️ 관찰법이란?
현미경 관찰법은 빛이 샘플을 통과하거나 반사되는 방식에 따라 다양하게 나뉩니다. 같은 현미경이라도 어떤 관찰법을 선택하느냐에 따라 보이는 정보가 완전히 달라지기 때문에, 연구 목적에 맞는 관찰법을 이해하는 것이 중요합니다.
명시야
→
암시야
→
위상차
→
편광
→
DIC
→
형광
① 명시야 (Brightfield)
원리: 빛이 샘플을 투과하면서 샘플의 밀도·두께·색소에 따라 흡수되는 양이 달라지고, 그 차이가 명암 대비로 나타남
장점: 구성이 단순하고 가장 저렴. 특별한 전처리 없이 바로 관찰 가능
단점: 염색하지 않은 무색 샘플(살아있는 세포 등)은 대비가 거의 없어 보기 어려움
적합한 샘플: H&E 염색 조직 슬라이드, 혈액 도말, 세균 염색, 식물 조직
💡 핵심 — 염색된 조직 슬라이드 관찰의 표준. 병리조직검사, 교육용 현미경의 기본 관찰법입니다.
▲ 명시야 — H&E 염색 조직 슬라이드 예시
② 암시야 (Darkfield)
원리: 직진하는 빛(직사광)을 차단하고, 샘플에서 산란된 빛만 검출. 배경은 어둡고 샘플은 밝게 빛나는 효과
장점: 염색 없이도 투명한 샘플의 윤곽·표면 구조를 선명하게 관찰 가능. 나노입자·박테리아 편모처럼 매우 작은 구조도 검출
단점: 세포 내부 구조의 대비는 위상차나 DIC보다 낮음. 두꺼운 샘플에 적합하지 않음
적합한 샘플: 무염색 세균·미생물, 혈구 세포 형태, 나노입자, 콜로이드 용액
💡 핵심 — 암시야 콘덴서(Dark-field Condenser) 또는 암시야 패치스톱(Patch stop)을 콘덴서에 삽입하여 구성합니다.
▲ 암시야 — 플랑크톤·수중 부유생물 관찰
③ 위상차 (Phase Contrast)
원리: 빛이 샘플을 통과하면 굴절률 차이에 의해 위상(phase)이 변함. 이 위상 차이를 명암 대비로 변환하는 광학 시스템
구성 요소: 위상차 링(콘덴서에 장착) + 위상차 대물렌즈(Phase plate 내장)
장점: 염색·고정 없이 살아있는 세포 관찰 가능. 세포 핵, 세포질, 미토콘드리아 등 내부 구조 구분
단점: 두꺼운 샘플에서 Halo Artifact(테두리 밝은 빛) 발생. T-flask 같은 두꺼운 플라스틱 바닥에서는 효과 감소
적합한 샘플: 살아있는 배양세포, 세포 이동·분열 타임랩스, 정자 운동성 관찰
💡 핵심 — 도립현미경의 가장 기본적인 관찰법. Leica DMi1, DMi8 등 도립현미경은 위상차가 기본 포함됩니다.
▲ 위상차 — 무염색 살아있는 세포 관찰 예시
⚠️ 콘덴서 정렬 필수 — 위상차 링과 대물렌즈의 Phase plate가 정확히 일치해야 합니다. 대물렌즈를 교체할 때마다 콘덴서 터렛도 맞는 PH 번호(PH0, PH1, PH2, PH3)로 전환해야 합니다.
④ 편광 (Polarized Light)
원리: 편광자(Polarizer)와 검광자(Analyzer)를 직교(90°)로 배치. 이방성(birefringent) 구조를 가진 샘플은 편광을 회전시켜 밝게 빛나고, 등방성 구조는 어둡게 보임
장점: 결정 구조, 콜라겐 섬유, 아밀로이드, 광물 등 이방성 물질을 선명하게 시각화
단점: 등방성 물질에는 대비가 생기지 않음
적합한 샘플: 암석 박편(지질학), 콜라겐·근육 조직(편광 조직학), 요산 결정(통풍 진단), 약품 결정 분석
💡 핵심 — 편광 재물대는 360° 회전 가능해야 합니다. 빛 방위각에 따라 이방성 신호가 달라지기 때문입니다.
▲ 편광 — 결정·콜라겐 관찰 예시
⑤ DIC (Differential Interference Contrast)
원리: 편광된 빛을 Nomarski 프리즘으로 두 광선으로 분리 → 샘플을 약간 다른 경로로 통과 → 재결합 시 위상 차이를 명암으로 변환. 3D 부조(relief) 효과가 나타남
장점: 위상차보다 해상도가 높고 Halo Artifact 없음. 세포 표면과 내부 구조가 입체적으로 표현됨
단점: 플라스틱 배양접시와 호환 불가 (편광 왜곡). Glass Bottom Dish 필수. 구성 비용이 위상차보다 높음
적합한 샘플: 살아있는 세포 (Glass dish), 발생 배아, 세포 분열, 세포 표면 미세구조
💡 핵심 — DIC는 반드시 Glass Bottom Dish가 필요합니다. 위상차보다 섬세한 세포 내부 구조 관찰에 적합하며, Leica DM4B·DM6B·DMi8에 구성 가능합니다.
▲ DIC — 마우스 섬유아세포·Tradescantia·Micrasterias
| 비교 | 위상차 | DIC |
|---|---|---|
| Halo Artifact | 있음 | 없음 |
| 해상도 | 보통 | 높음 |
| 플라스틱 Dish | 가능 | 불가 (Glass 필수) |
| 비용 | 상대적 저렴 | 높음 |
| 두꺼운 샘플 | 어려움 | 어려움 |
⑥ IMC (Integrated Modulation Contrast)
원리: 빛의 위상 그래디언트를 이용해 샘플의 굴절률 차이를 명암으로 변환. Hoffman Modulation Contrast에서 발전한 방식으로 편광 소자 없이 대비를 생성
장점: 위상차의 Halo artifact가 없고, DIC와 달리 플라스틱 배양용기에서도 사용 가능. Glass Bottom Dish 불필요
위상차와의 차이: 위상차는 링 구조를 이용한 전체 위상 차이 변환, IMC는 공간적 위상 그래디언트를 단방향으로 변환 → 3D 부조 효과 유사
적합한 샘플: 플라스틱 dish 내 살아있는 세포, T-flask 배양세포, 두꺼운 플라스틱 용기에서의 세포 관찰
💡 핵심 — 플라스틱 dish에서 위상차보다 깔끔한 이미지가 필요할 때 IMC가 유용합니다. Leica 일부 도립현미경에 옵션으로 구성 가능합니다.
▲ IMC — 플라스틱 dish 내 살아있는 세포 관찰 예시
| 비교 | 위상차 | IMC | DIC |
|---|---|---|---|
| Halo Artifact | 있음 | 없음 | 없음 |
| 플라스틱 Dish | 가능 | 가능 | 불가 |
| 3D 부조 효과 | 약함 | 중간 | 강함 |
| 구성 비용 | 저 | 중 | 고 |
⑦ 형광 (Fluorescence)
원리: 형광 물질(형광염료·형광단백질)에 특정 파장의 빛을 조사 → 에너지를 흡수 후 더 긴 파장의 빛(형광)을 방출 → 필터로 여기광과 형광을 분리하여 검출
장점: 특정 단백질·구조를 선택적으로 표지하여 관찰. 멀티채널로 여러 타깃 동시 관찰 가능. 정량 분석 가능
단점: 광표백(Photobleaching)·광독성(Phototoxicity) 주의. 염색 전처리 과정 필요. 광원 장치 및 필터 큐브 추가 비용
적합한 샘플: 세포 내 특정 단백질 발현, 면역형광염색(IF) 조직, GFP 발현 세포, 핵 DAPI 염색
💡 자세한 내용 →
▲ 형광 — 멀티채널 형광 이미징 예시
📌 관찰법 선택 빠른 가이드
| 목적 | 추천 관찰법 | 비고 |
|---|---|---|
| 염색된 조직 슬라이드 관찰 | 명시야 | H&E, Masson's trichrome 등 |
| 살아있는 세포 관찰 (플라스틱 dish) | 위상차 | 도립현미경 기본 구성 |
| 살아있는 세포 관찰 (Glass dish) | DIC | 더 높은 해상도·입체감 |
| 특정 단백질·구조 표지 | 형광 | 염색 전처리 필요 |
| 결정·콜라겐·이방성 구조 | 편광 | 지질학·조직학 |
| 무염색 투명 샘플 윤곽 검출 | 암시야 | 나노입자·박테리아 |
| 플라스틱 Dish, Halo 없는 세포 관찰 | IMC | Glass Bottom 불필요 |
| 두꺼운 3D 샘플 내부 형광 | 형광 + THUNDER | 오가노이드·뇌 절편 |
💡 현미경 선택이 고민된다면 — Microscope Finder ↑를 이용해 나에게 맞는 현미경을 바로 찾아보세요.